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黑素細(xì)胞的提取和培養(yǎng)Protocol

來源:啟達(dá)生物  瀏覽量:1953  發(fā)布時間:2023-10-26

黑色素細(xì)胞是黑色素產(chǎn)生細(xì)胞,存在于皮膚、內(nèi)耳、神經(jīng)系統(tǒng)和心臟中(李,2014)。黑色素細(xì)胞及其前體細(xì)胞,即黑色素母細(xì)胞,起源于神經(jīng)嵴細(xì)胞。了解黑素細(xì)胞的個體發(fā)生是發(fā)育生物學(xué)中的一個關(guān)鍵領(lǐng)域,對人類健康具有重要意義,與黑素細(xì)胞譜系細(xì)胞缺陷相關(guān)的大量人類疾病就是明證。那么黑素細(xì)胞怎么分離?

首先第一步準(zhǔn)備好試劑:

黑素細(xì)胞,MM黑素細(xì)胞培養(yǎng)基(啟達(dá)生物,貨號:P5001),胰酶,PBS,F(xiàn)ACS等

一、飼養(yǎng)層細(xì)胞培養(yǎng):

1.將ST2細(xì)胞維持在ST2培養(yǎng)基中。處理來自T25組織培養(yǎng)瓶的細(xì)胞培養(yǎng)物的程序如下所述。所有步驟均在層流生物安全柜中無菌進行。

2.一旦ST2培養(yǎng)物達(dá)到80%匯合,通過抽吸去除生長培養(yǎng)基。

3.輕輕加入5 mL溫?zé)幔?7°C)無菌無Ca2+和無Mg2+的PBS,沖洗細(xì)胞單層并通過抽吸去除。

4.將細(xì)胞胰蛋白酶化,加入1mL 0.25%胰蛋白酶/EDTA溶液,并將細(xì)胞置于細(xì)胞培養(yǎng)箱中。

每隔2-4分鐘通過相差顯微鏡檢查細(xì)胞脫離的程度。

5.一旦約90%的細(xì)胞分離,加入7 mL溫?zé)幔?7°C)生長培養(yǎng)基使胰蛋白酶失活,并輕輕混合細(xì)胞懸浮液以產(chǎn)生單細(xì)胞懸浮液。

6.將1 mL細(xì)胞懸浮液轉(zhuǎn)移到含有5 mL溫?zé)幔?7°C)生長培養(yǎng)基的新T25細(xì)胞培養(yǎng)瓶中。輕輕混合,將細(xì)胞放入培養(yǎng)箱中。

7.為了保持指數(shù)細(xì)胞增殖,每三天抽吸一次生長培養(yǎng)基,并用5mL新鮮生長培養(yǎng)基代替。不要讓培養(yǎng)物達(dá)到80%以上的融合。

圖片1.png

二、制備飼養(yǎng)層細(xì)胞

1.將在T25燒瓶中培養(yǎng)的ST2細(xì)胞胰蛋白酶消化后,將細(xì)胞懸浮液轉(zhuǎn)移到15mL錐形管中。

2.將細(xì)胞在22°C下以200×g離心5分鐘。吸取上清液,將細(xì)胞沉淀輕輕重懸于1 mL溫?zé)幔?7°C)RPMI生長培養(yǎng)基中。

3.使用血細(xì)胞儀測定細(xì)胞密度,并通過添加適當(dāng)體積的溫?zé)酭PMI生長培養(yǎng)基調(diào)節(jié)至70000個細(xì)胞/mL。

4.將100μL細(xì)胞懸浮液添加到放置在35mmμ皿中的4孔插入物的每個孔中(7000 ST2細(xì)胞/孔),并培養(yǎng)過夜。

注:使用光學(xué)級塑料的μ-培養(yǎng)皿可以實現(xiàn)高質(zhì)量成像和最佳的細(xì)胞附著和擴散。

5.鋪板后的第二天,在分離和純化靶向黑色素母細(xì)胞(見下文)之前,通過抽吸去除ST2生長培養(yǎng)基。

6.向每個孔中加入100μL由黑素細(xì)胞生長培養(yǎng)基和ST2-RPMI生長培養(yǎng)基的1:1混合物組成的溫暖(37°C)新鮮培養(yǎng)基。

7.將ST2飼養(yǎng)細(xì)胞放回培養(yǎng)箱中。

三、目的胚胎黑色素母細(xì)胞的分離

1. 單劑量IP給藥他莫昔芬四天后(步驟B4),按照適當(dāng)?shù)臋C構(gòu)批準(zhǔn)的動物護理倫理程序,通過吸入二氧化碳或過量使用異氟烷,在15.5 dpc時對妊娠期母鼠實施安樂死。

2.將動物仰臥在吸收墊上,用70%乙醇浸泡胸部和腹部。

3.用鉗子輕輕向外捏腹部中心以下的腹部皮膚,并用外科剪刀在中線上做一個小切口,確保不會切開腹腔。沿著腹部中線切開皮膚,輕輕地將皮膚拉向兩側(cè),使其與下面的腹腔分離,從而露出子宮(圖1)。

4.用鉗子輕輕地將含有一串胚胎的子宮從體腔中取出。將子宮轉(zhuǎn)移到含有無菌PBS的培養(yǎng)皿中,保持室溫(22°C)。通過沿著子宮角在植入部位之間仔細(xì)切割來分離胚胎(圖1)。

5.胚胎分離是在立體顯微鏡下進行的。為此,將單個胚胎和相關(guān)的子宮組織轉(zhuǎn)移到另一個含有PBS的培養(yǎng)皿中。將胚胎保存在PBS中,用鑷子從胚胎上剝離肌肉子宮層,然后去除蛻膜和胎盤外錐。

6.用鉗子輕輕撕裂卵黃囊,輕輕撕裂臍帶,使其與胚胎完全分離。

7.將胚胎轉(zhuǎn)移到含有PBS的無菌組織培養(yǎng)皿中,并置于冰上。在這個階段,可以去除胚胎尾部的一小段,并在必要時進行基因組DNA提取和基因分型處理(圖1)

圖片2.png

8.將胚胎轉(zhuǎn)移到放置在立體顯微鏡臺上的含有無菌PBS的培養(yǎng)皿中。

9.用鉗子將胚胎保持在俯臥位,用手術(shù)刀在頭部下方沿著中線輕輕地在整個胎體上做一個淺的縱向背側(cè)切口,避免造成器官暴露的深切口。

10.使用剪刀,從最靠近頸部的切口點開始,輕輕地逐漸將皮膚與尸體分離。

注意:胚胎皮膚非常脆弱。用一把鉗子通過胚胎的頭部夾住胚胎,用另一把鉗子輕輕地將皮膚與胎體分離。

11.將每個收獲的皮膚漂浮在含有冰冷無菌PBS的無菌培養(yǎng)皿中。繼續(xù)采集所有剩余胚胎的皮膚。

12.用鑷子小心地將胚胎皮膚轉(zhuǎn)移到無菌錐形管中,每個皮膚含有500μL無菌2.5%胰蛋白酶。

注:如果需要對單個胚胎進行分析,可以在含有500μL 2.5%胰蛋白酶的2mL微型試管中消化每個皮膚,然后切碎。

13.用小剪刀將皮膚切成約2毫米×2毫米的碎片,并在37°C下輕輕搖動孵育10分鐘后,肉眼觀察皮膚基本已經(jīng)完成消化成絮狀物,加入1mL胰蛋白酶中和溶液,輕輕混合。

14.通過40μm孔徑的無菌細(xì)胞過濾器將細(xì)胞懸浮液過濾到15mL無菌錐形管中,以去除組織碎片。

15.為了獲得單細(xì)胞懸浮液,將過濾的細(xì)胞混合物輕輕地通過裝有21G針的5或10mL注射器10次,在22°C下以140×g離心5分鐘。

16.通過抽吸小心地去除上清液,避免干擾細(xì)胞沉淀。

17.在300–500μL冰冷的FACS分選緩沖液中重新懸浮胚胎細(xì)胞。

注:在較大體積的FACS分選緩沖液中重新懸浮細(xì)胞將導(dǎo)致流速降低和分選時間增加,從而導(dǎo)致細(xì)胞活力降低。

18.將細(xì)胞懸浮液轉(zhuǎn)移到5 mL BD Falcon玻璃管中,并置于冰上。

19.立即進行黑色素母細(xì)胞的細(xì)胞染色和FACS純化。

20.將細(xì)胞分類到含有冰冷黑素細(xì)胞培養(yǎng)基的無菌管中。

21.在分選機中對分選的細(xì)胞懸浮液進行小份等分,用蓋子密封含有剩余分選黑色素母細(xì)胞的試管,并將其輸送到細(xì)胞培養(yǎng)房進行后續(xù)播種。

22.將分選的GFP陽性黑色素母細(xì)胞接種到含有先前制備的ST2飼養(yǎng)細(xì)胞融合單層的35mmμ-培養(yǎng)皿的插入孔中(D部分),并在37°C下培養(yǎng)。

注:每個胚胎獲得的GFP陽性黑色素母細(xì)胞的平均數(shù)量約為500(范圍從50到1400)。從4-8個胚胎中獲得的黑色素母細(xì)胞可以合并到一個孔中。

23.分選16小時后,用移液管輕輕移走吸取的生長培養(yǎng)基,以避免干擾細(xì)胞單層,并用新鮮的生長培養(yǎng)液代替。

注:接種16小時后,約70%的黑色素母細(xì)胞將完全擴散并開始表現(xiàn)出樹枝狀(如下圖)。

圖片33.png圖片44.png

參考文獻(xiàn):

1.Abdallah, B. M., Alzahrani, A. M., Abdel-Moneim, A. M., Ditzel, N. and Kassem, M. (2019). A simple and reliable protocol for long-term culture of murine bone marrow stromal (mesenchymal) stem cells that retained their in vitro and in vivo stemness in long-term culture. Biol. Proced. Online 21(1): e1186/s12575-019-0091-3.

2.Adameyko, I., Lallemend, F., Aquino, J. B., Pereira, J. A., Topilko, P., Müller, T., Fritz, N., Beljajeva, A., Mochii, M., Liste, I., et al. (2009). Schwann Cell Precursors from Nerve Innervation Are a Cellular Origin of Melanocytes in Skin. Cell 139(2): 366–379.

3.Bosenberg, M., Muthusamy, V., Curley, D. P., Wang, Z., Hobbs, C., Nelson, B., Nogueira, C., Horner, J. W., DePinho, R., Chin, L., et al. (2006). Characterization of melanocyte-specific inducible Cre recombinase transgenic mice. genesis 44(5): 262–267.

4.Chevalier, C., Nicolas, J. F. and Petit, A. C. (2013). Preparation and Delivery of 4-Hydroxy-Tamoxifen for Clonal and Polyclonal Labeling of Cells of the Surface Ectoderm, Skin, and Hair Follicle. In: Turksen, K. (Ed.). Epidermal Cells (pp. 239–245). Methods in Molecular Biology. Springer, New York.

5.Crawford, M., Leclerc, V., Barr, K. and Dagnino, L. (2020). Essential Role for Integrin-Linked Kinase in Melanoblast Colonization of the Skin. J. Invest. Dermatol. 140(2): 425–434.e10.


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