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劃重點-細胞敲除必備

來源:啟達生物  瀏覽量:3009  發(fā)布時間:2023-04-27

走上人跡罕至的道路,產(chǎn)生一個敲除細胞系而不是敲除細胞?我們在這篇文章中為您介紹了利用同源定向修復途徑、設計最佳供體DNA以及避免此類基因組編輯中常見事故的技巧和竅門。

 

敲入突變和基因編輯

靶向基因組編輯事件分為兩大類:細胞敲除和動物敲除。敲除的目的是通過產(chǎn)生移碼突變來破壞DNA翻譯。大多數(shù)細胞修復事件都會產(chǎn)生這些類型的突變,使其成為一項“簡單”的編輯工作。然而,對于敲門磚來說,情況并非如此。敲入突變通常需要在精確的基因組位置結合精確的DNA序列,幾乎沒有錯誤的余地。毫不奇怪,這些編輯比淘汰對手需要更多的計劃和技巧。

 

要開始一個敲門實驗,首先要問的問題是從哪里敲除,所以需要確定你想在基因組中引入你的敲門磚的位置。然后選擇使用哪種Cas酶,并設計一個gRNA到你想引入編輯的地方。最后,你必須知道引入什么序列,這是通過設計和使用供體DNA分子來完成的。你的供體分子需要與新序列兩側的靶基因座具有同源性。這種同源性將引導細胞使用供體DNA作為修復的模板,這樣才會讓你的序列的結合,最后敲除成功!那么,捐贈者是如何被用作修復的模板的呢?請看以下分解。

 

同源性定向修復與基因組工程

制造敲除細胞系的最簡單方法是利用細胞已經(jīng)具有的內(nèi)置修復途徑來修復DNA雙鏈斷裂——(HR)。

HR是哺乳動物細胞中占主導地位的同源定向修復(HDR)途徑,但通常是一種不太常見的DNA修復機制。平均而言,它只占DNA修復不到10%,不同細胞類型的修復率各不相同。差異可能是由細胞周期速率引起的;快速生長的細胞將比緩慢的細胞具有更高的HR頻率。重要的是要知道HR經(jīng)常在癌癥細胞中發(fā)生突變,特別是在實驗室常用的乳腺和卵巢細胞系中。建議您在嘗試HDR敲除之前檢查細胞系中HR相關的突變。

23-4-28.png

1:通過同源重組修復DNA雙鏈斷裂的早期步驟。

 

設計HDR

HDR途徑的基礎依賴于模板分子的修復,模板分子通常是內(nèi)源性可用的姐妹染色單體,盡管也可以使用外源DNA。以下是為成功的HDR活動設計供體DNA的一些考慮因素。

 

CRISPR切割位置

CRISPR切割部位盡可能靠近敲入位置。HDR依賴于在斷裂部位切除形成ssDNA,并利用ssDNA的末端找到修復模板。當插入物在斷裂的10bps以內(nèi)時,觀察到最高的HDR效率,使切割基本上作為模板DNA的一部分。

 

同源序列樣本類型

為了確保你的供體分子被用作模板,你需要在敲入位點的右邊和/或左邊加入同源序列。該序列的長度和組成(單股與雙股)都取決于載體的大小。同源序列40bps的單鏈寡核苷酸供體(ssODN)可以有效地敲入幾百bps的序列。然而,如果你有一個更大的敲除(200 bp2 kb),由于寡核苷酸的合成限制,將需要使用dsDNA供體。這些載體傳統(tǒng)上在500bp1kb范圍內(nèi)具有較大的同源序列,然而,最近也有使用了較短的同源區(qū)并取得了一些成功(Yu等人,Nat Chem Biol)。

突變PAMsgRNA序列

Cas9可能在靶位點經(jīng)歷多輪切割,直到PAM位點或引導物識別序列的一部分通過突變被破壞。通過在供體DNAPAM或引導識別序列中引入突變,可以保證HDR后不會再靶向。如果你的Cas9切入了一個基因的編碼區(qū),請確保你引入的PAM編輯是一個沉默的突變,這樣你就不會意外地改變你感興趣的蛋白質(zhì)。

23-4-27圖2.png 

2:停止PAM的再切割并引導供體DNARNA破壞突變

 

HDR提升到其他編輯之上

HDR并不是DNA修復最常見的編輯途徑。HDR編輯時傾斜刻度,您可以嘗試以下一個或多個不同的編輯位置

 

其他修復機制

除了HR之外,哺乳動物細胞還有兩種主要的修復機制——非同源末端連接(NHEJ)和替代末端連接(alt-EJ)。對這兩種途徑的重要成分的抑制劑已被證明對增加HR編輯成功是有效的(Yang等人,Int J Mol Sci)。在引入Cas9之前和之后,將這些抑制劑添加到培養(yǎng)基中會增加HDR,只需確保在一兩天內(nèi)去除抑制劑,以免影響細胞的生存能力。

 

富集S期細胞

HR主要作用于細胞周期的S期和G2期,此時姐妹染色單體可能作為修復模板存在。要最大限度地提高HDR釋放,請確保細胞在細胞周期階段中積極循環(huán)。如果細胞過度融合或培養(yǎng)基中沒有足夠的營養(yǎng)物質(zhì),它們就不會進行DNA復制,所以一定要注意這些細胞!更進一步,你可以抑制負責S期過渡的細胞周期調(diào)節(jié)蛋白,使細胞在HDR促進的周期中停留更長時間。如果細胞停留時間過長,這種方法可能會對生存能力產(chǎn)生一些負面影響。長時間的細胞周期停滯可以在短短10小時內(nèi)導致細胞凋亡

 

使用快速Cas剪輯

如果晉升人力資源就像換掉你的Cas9一樣簡單呢?可以!Cas12aCas家族成員,在切割時會產(chǎn)生粘性末端。Cas12a可能通過在斷裂部位產(chǎn)生ssDNA懸突來促進HDR,這是早期的HR步驟(Moreno-Mateos等人,Nat-Com)。

 

另一種用于啟動HRCas斷裂的方法是將HR蛋白融合到核酸酶上。與Cas9融合的早期HR因子已被證明可以通過在其他因子加載到斷裂上之前中斷進行HR來增加HDR頻率,從而可能使修復沿著不同的途徑來進行Charpentier等人,Nat-Com)。

23-4-28圖3.png 

3:HDR切入NHEJ介導的小插入和缺失編輯競爭。

 

References

Yu, Y., Guo, Y., Tian, Qigi, Lan, Y., et. al. An efficient gene knock-in strategy using 5’-modified dsDNA donors with short homology arms. Nat Chem Biol., 308(20): 1-9 (2020). 10.1038/s41589-019-0432-1

Mehdi Banan. Recent advances in CRISPR/Cas9-mediated knock-ins in mammalian cells. J Biotechnol., 16(4): 387-390 (2020). 10.1016/j.jbiotec.2019.11.010

Wright, D. W., Shah, S. S., Heyer, W. D. Homologous recombination and the repair of DNA double strand breaks. J Biol Chem., 293(27): 10524-10535 (2018). 1 10.1074/jbc.TM118.000372

Yang, H., Ren, S., Yu, S., Pan, H., et al. Methods favoring homology-directed repair choice in response to CRISPR/Cas9 Induced-double strand breaks. Int J Mol Sci., 21(18): 6461 (2020). 10.3390/ijms21186461

Lin, S., Staahl, B. T., Alla, R. K., Doudna, J. A. Enhanced homology-directed human genome engineering by controlled timing of CRISPR/Cas9 delivery. eLIFE. (2014) 10.7554/eLife.04766

Moreno-Mateos, M. A., Fernandez, J. P., Rouet, R., Vejnar, C. E., et al. CRISPR-Cpf1 mediates efficient homology-directed repair and termperature-controlled genome editing. Nat. Com., 8(2024), (2017). 10.1038/s41467-017-01836-2

Charpentier, M., Khedher, A. H. Y., Menerot, S., Brion, A., et al. CtIP fusion to Cas9 enhances transgene integration by homology-dependent repair. Nat. Com., 9-1133 (2018). 10.3390/ijms21186461

 


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